麻痹性貝類毒素ELISA試劑盒

                                                           (ELISA) 使用說明書

?麻痹性貝類毒素ELISA試劑盒用于肉類組織（如雞、牛肉和豬肉），血清和尿樣中麻痹性貝類毒素殘留的定量檢測。

實驗原理

本試劑盒采用競爭ELISA方法，在微孔板包被有麻痹性貝類毒素偶聯(lián)抗原，加入麻痹性貝類毒素標(biāo)準(zhǔn)品或樣品，游離麻痹性貝類毒素與微孔條上預(yù)包被的麻痹性貝類毒素偶聯(lián)抗原互相競爭抗麻痹性貝類毒素抗體酶標(biāo)記物，用TMB底物顯色，加入終止液后顏色由藍(lán)色變?yōu)辄S色，用酶標(biāo)儀在450nm波長下進行檢測，吸光值與樣品中麻痹性貝類毒素含量成反比，通過標(biāo)準(zhǔn)曲線計算樣品中麻痹性貝類毒素的含量。 

試劑盒組成

3.1 預(yù)包被的麻痹性貝類毒素偶聯(lián)抗原的可拆酶標(biāo)板：1塊（12孔×8條）。
3.2麻痹性貝類毒素標(biāo)準(zhǔn)品：6瓶（1ml/瓶），含量分別是： 0 ppb，0.1 ppb,0.3 ppb,0.9 ppb,2.7 ppb,8.1 ppb。
3.3抗麻痹性貝類毒素抗體酶結(jié)合物：1瓶（6ml）。
3.4顯色液A：1瓶（6ml）。
3.5顯色液B：1瓶（6ml）。
3.6終止液：1瓶（6ml），2M硫酸。
3.7樣本/稀釋液：1瓶（10×,  6ml），用于樣品稀釋用。
3.8濃縮洗滌液：1瓶（20×，20ml），用于洗板。
3.9說明書一份。

需要而未提供的材料

4.1 設(shè)備
4.1.1波長450nm酶標(biāo)儀。
4.1.2粉碎機。
4.1.3量筒。
4.1.4振蕩器。
4.1.5漏斗。
4.1.6Whatman No 1或相當(dāng)?shù)臑V紙。
4.1.7微量移液器。
4.2 試劑
4.2.1去離子水或蒸餾水。
4.2.2 甲醇。

5 貯存

5.1 試劑盒貯存于2~8℃，切勿冷凍
5.2 未用完的微孔板應(yīng)該密封干燥保存

6 注意事項

6.1 使用試劑盒前請仔細(xì)閱讀說明書。

6.2 不要使用過期試劑盒。
6.3 試劑盒使用前，將試劑恢復(fù)至室溫（25±2℃），建議至少回溫2小時。
6.4 標(biāo)準(zhǔn)品中含有麻痹性貝類毒素，使用時應(yīng)特別注意，操作時應(yīng)帶手套。
6.5 終止液中含有硫酸，使用時防止灼傷皮膚及腐蝕衣物。
6.6 不同標(biāo)準(zhǔn)品、樣品所用吸頭不能混用，否則會影響試驗結(jié)果。
6.7 不同批號試劑盒中的試劑不得混用；不同標(biāo)準(zhǔn)品、樣品所用吸頭不得混用，否則會影響實驗結(jié)果。
6.8 稀釋樣本時必須用本試劑盒中的樣本/稀釋液，否則會影響實驗結(jié)果
6.9 混合試劑時應(yīng)避免起泡。

7 工作液準(zhǔn)備

7.1 麻痹性貝類毒素標(biāo)準(zhǔn)品溶液：0ppb,0.1ppb,0.3 ppb,0.9ppb,2.7 ppb,8.1ppb
7.2 濃縮洗滌液：用蒸餾水按1:20(1+19)稀釋備用

7.3 樣本/稀釋液：用蒸餾水按1:10(1+9)稀釋備用
7.3 顯色劑：已備用，避免光線直照
7.4 反應(yīng)終止液：已備用

8 樣品處理程序（樣品在提取過程中，要嚴(yán)格按說明書操作，提取過程中應(yīng)準(zhǔn)確稀釋，否則會出現(xiàn)結(jié)果不準(zhǔn)確，樣品應(yīng)當(dāng)保存在陰涼避光之處及冷藏保存）
8.1取10g粉碎的樣品，加 20ml 70%甲醇溶液
8.2強力振蕩3分鐘
8.3用Whatman No 1濾紙過濾
8.4取25µl處理后的樣品，加入25µl樣本/稀釋液于反應(yīng)孔中（樣本稀釋倍數(shù)為2）

9 酶免分析步驟9.1 實驗須知
9.1.1 實驗開始前請將所有試劑于盒外充分恢復(fù)至室溫（25±2℃），時間約2小時?；販刂潦覝兀?5±2℃）后再取出微孔條，多余的微孔條重新密封立即于2~8℃干燥保存
注：一定保證回溫充分，否則影響檢測的精確度和準(zhǔn)確度。
9.1.2 使用后請立即將試劑放回2~8℃保存
9.1.3 請不要改變分析程序
9.1.4 請使用精確的微量移液器
9.1.5 操作一旦開始，請不要中斷任何程序
9.1.6 ELISA結(jié)果的可重復(fù)性極大程度的取決于操作程序，請嚴(yán)格按照要求操作
9.1.7 為避免交叉污染，每個標(biāo)準(zhǔn)品和樣品均應(yīng)使用不同的吸頭加樣
9.1.8 加樣時請勿讓吸頭接觸微孔中的溶液或內(nèi)表面
9.2 分析步驟
9.2.1 預(yù)先進行編號，標(biāo)記B0、標(biāo)準(zhǔn)品和樣品的位置，推薦進行雙孔檢測
9.2.2 取所需數(shù)量的微孔（微孔條可拆），將多余板條重新密封并立即放回2~8℃保存
9.2.3 樣品稀釋液（10×）、濃縮洗滌液（20×）稀釋成工作液(蒸餾水或去離子水稀釋)
9.2.4 在B0孔中加入50µl  0.0ppb標(biāo)準(zhǔn)品溶液
9.2.5 在各標(biāo)準(zhǔn)孔中加入50μl的標(biāo)準(zhǔn)品溶液
9.2.6 在各樣品孔中加入50µl樣品溶液
9.2.7 在所有孔中加入50µl的抗麻痹性貝類毒素抗體酶結(jié)合物
9.2.8 輕輕晃動反應(yīng)板幾秒鐘。
9.3 37℃溫浴30min （溫浴過程中不時輕拍反應(yīng)板，可以減少雙孔誤差）
9.3.1 甩掉孔中液體，用洗液洗滌微孔板5次，最后一次應(yīng)在吸水紙上拍打以wan全除去孔中液體。
9.4 反應(yīng)
9.4.1 洗滌程序完成后，立即用微量移液器在每個微孔中先加入50µl顯色液A，再加 50µl顯色液B；輕微晃動反應(yīng)板使之徹di混勻
9.4.2 37℃溫浴10min
9.4.3 每孔中加入50µl終止液，混勻
9.4.4 在450nm下檢測吸光度，結(jié)果在5min內(nèi)讀取。

10 結(jié)果計算

10.1定量分析
10.1.1所獲得的每個濃度標(biāo)準(zhǔn)溶液和樣本吸光度值的平均值（B）除以第一個標(biāo)準(zhǔn)（0標(biāo)準(zhǔn)）的吸光度值（B0）再乘以100%，即百分吸光度值。
B—標(biāo)準(zhǔn)溶液或樣本溶液的平均吸光度值
B0—0ppb標(biāo)準(zhǔn)溶液的平均吸光度值
10.1.2以麻痹性貝類毒素濃度的對數(shù)值為X軸，百分吸光度值為Y軸，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線圖。根據(jù)樣品百分吸光度值，可從曲線上得到對應(yīng)點的橫坐標(biāo)，即為麻痹性貝類毒素濃度的對數(shù)值，求得反對數(shù)即為測定液中麻痹性貝類毒素濃度C（ppb）
10.1.3由于樣品經(jīng)過了預(yù)先稀釋，因此根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線所得出的樣品濃度一定要再乘以其稀釋倍數(shù)。
10.2 半定量測定
10.1.1目測半定量測定：首先選擇一個適當(dāng)?shù)臉?biāo)準(zhǔn)液與樣品同運行，根據(jù)樣品與標(biāo)準(zhǔn)品顏色深淺比較，判斷樣品濃度值是小于還是大于標(biāo)準(zhǔn)值。
10.1.2儀器半定量測定：首先選擇一個適當(dāng)?shù)臉?biāo)準(zhǔn)液與樣品同運行，根據(jù)樣品與標(biāo)準(zhǔn)品吸光度值的高低比較，判斷樣品濃度值是小于還是大于標(biāo)準(zhǔn)值。

11 特異性
物質(zhì) 交叉反應(yīng)
麻痹性貝類毒素 100%
 
12 試劑盒參數(shù)
本試劑盒檢測下限為0.05ppb
B0吸光度最佳值應(yīng)大于1.0
試劑盒吸光度板內(nèi)誤差小于8％，板間誤差小于15％。
用本說明書提供的組織樣本提取方法回收率大于80％。

13
試劑盒提供的標(biāo)準(zhǔn)曲線范圍為0.1ppb~8.1ppb。

14 分析限制
本試劑盒檢測為陽性的樣品應(yīng)該用另一種方法如HPLC或GC/MS加以確證。